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獸醫病毒學試驗技術(簡體書)
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獸醫病毒學試驗技術(簡體書)

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目次
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本書主要內容包括病毒的分離與純化技術、病毒感染力的測定技術、病毒的免疫學實驗技術、病毒的分子生物學實驗技術、噬菌體的分離與純化技術等內容。

名人/編輯推薦

索朗斯珠編著的《獸醫病毒學實驗技術》由西藏大學農牧學院“211”工程創新人才培養項目、預防獸醫學自治區級重點學科建設項目資助,西藏大學農牧學院的多位在教學和科研第一線的教師共同編寫。本實驗技術包括了獸醫病毒學的基本試驗方法和實驗技術,不僅詳細介紹工作原理,而且還詳細地列出了具體的操作步驟及相關溶液的配制,注重實驗技術的可操作性和學生實驗技能的培養。本實驗技術可作為獸醫專業本、專科學生的實驗教材,也可作為獸醫專業研究生和動物疾病診斷從業人員的參考書。

目次

實驗室規則
第一章病毒學實驗的準備工作
一、實驗器材的清洗
二、實驗器材的干燥與消毒
第二章病毒的分離與純化技術
一、病毒標本的采集與處理
二、病毒的分離技術
三、病毒的純化技術
四、病毒的保存技術
五、病毒的形態學觀察技術
第三章病毒感染力的測定技術
一、空斑形成單位測定技術
二、半數(雞胚、細胞)感染量測定技術
第四章病毒的免疫學實驗技術
一、病毒的血凝試驗
二、病毒的血凝抑制試驗
三、病毒的中和試驗
四、病毒的間接免疫熒光試驗
五、病毒的間接酶聯免疫吸附試驗
六、病毒的免疫電鏡技術
七、病毒的單克隆抗體制備技術
第五章病毒的分子生物學實驗技術
一、病毒的聚合酶鏈反應技術
二、病毒的DNA印跡雜交技術
三、病毒的Northern印跡雜交技術
四、病毒的聚丙烯酰胺凝膠電泳技術
五、病毒的免疫印跡技術
六、病毒的熒光定量PCR檢測技術
第六章噬菌體的分離與純化技術
第七章動物實驗技術
附錄一常用液體配制方法
附錄二常用細胞培養液介紹
附錄三MTT比色試驗
參考文獻

書摘/試閱



3.皮內接種法
做家兔、豚鼠及小鼠皮內接種時,均需助手保定動物,其保定方法同皮下接種。接種時術者以左手拇指及食指夾起皮膚,右手持注射器,用細針頭插入拇指及食指之間的皮膚內,針頭插入不宜過深,同時插入角度要小,注入時感到有阻力,且注射完畢后皮膚上有硬泡即為注入皮內。皮內接種要慢,以防皮膚脹裂或自針孔流出病毒材料而散播傳染。
4.肌肉接種法
肌肉注射部位在禽類為胸肌,其他動物為后肢股部。術部消毒后,將針頭刺入肌肉內,注射病毒材料即可。
5.腹腔接種法
在家兔、豚鼠、小鼠作腹腔內接種,宜采用仰臥保定。接種時稍抬高后軀,使其內臟傾向前腔,在股后側插入針頭,先刺入皮下,后進入腹腔,注射時應無阻力,皮膚也無泡隆起。
6.靜脈注射法
(1)家兔靜脈注射將家兔納入保定器內或由助手把握住它的前、后軀保定,選一側耳邊緣靜脈,先用70%酒精涂擦兔耳或以手指輕彈耳朵,使靜脈努張。注射時,用左手拇指和食指拉緊兔耳,右手持注射器,使針頭與靜脈平行,向心臟方向刺入靜脈內,注射時無阻力且有血向前流動,即表示注入靜脈,緩緩注射感染材料,注射完畢用消毒棉球緊壓針孔,以免流血和病毒材料溢出。
(2)豚鼠靜脈注射使豚鼠伏臥保定,腹面向下,將其后肢剃毛,用75%酒精消毒皮膚,施以全身麻醉,用銳利刀片向后肢內上側向外下方切一個長約1 cm的切口,使其露出尾部,用最小號針頭(4號)刺入尾側靜脈,緩緩注入病毒材料。接種完畢,將切口縫合。
(3)小鼠靜脈接種注射部位為尾側靜脈。選15~20 g體重的小鼠,注射前將尾部浸入約500C溫水內1~2 min,使尾部血管擴張易于注射。用一燒杯扣住小鼠,露出尾部,用最小號針頭(4號)刺入尾側靜脈,緩緩注入病毒材料,注射時無阻力,皮膚不變白、不起隆,表示注入到靜脈內。

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